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白細(xì)胞的溫柔邂逅:WOLF G2單細(xì)胞柔性分選系統(tǒng)帶來的無激活、高活性分選新紀(jì)元

發(fā)布日期:2024-10-12



在探索人體復(fù)雜的免疫系統(tǒng)時(shí),我們經(jīng)常與一類特殊細(xì)胞—中性粒細(xì)胞(Neutrophils)不期而遇。它們是血液中數(shù)量僅次于紅細(xì)胞的細(xì)胞類型,占據(jù)了成人白細(xì)胞總數(shù)的40-70%[1]。中性粒細(xì)胞的主要免疫功能包括吞噬、脫顆粒和形成中性粒細(xì)胞胞外陷阱(NETs)。此外,它們還分泌幾種調(diào)節(jié)炎癥的細(xì)胞因子和趨化因子[2]。然而,中性粒細(xì)胞在體外研究中卻充滿了挑戰(zhàn),包括短至6-8小時(shí)的半衰期、對凋亡和激活的極度敏感性,以及難以擴(kuò)增和冷凍保存的特性。用密度梯度等傳統(tǒng)方法分離特定的中性粒細(xì)胞群體是具有挑戰(zhàn)性的,因?yàn)檫@種方法會(huì)增加極化反應(yīng),導(dǎo)致中性粒細(xì)胞的人工激活[3,4]。



NanoCellect Biomedical, Inc. 推出的WOLF G2 單細(xì)胞柔性分選系統(tǒng),以其溫和、低激活的分選方式,確保了更好的存活率和純度,使得中性粒細(xì)胞的研究和應(yīng)用邁出了重要一步。



01
實(shí)驗(yàn)方法


第一步:
中性粒細(xì)胞分離

在室溫條件下采集全血并于兩小時(shí)內(nèi)處理,通過雙梯度離心法從全血中分離中性粒細(xì)胞。全血與緩沖液(HBSS、1% BSA以及2mM EDTA)1:1混合后,置于由Leuko Spin Medium和PBMC Spin Medium組成的雙梯度中,經(jīng)過1000 x g離心30分鐘,收集粒細(xì)胞層。再通過緩沖液洗滌和1X RBC Lysis Buffer裂解紅細(xì)胞,最后用分選緩沖液重懸細(xì)胞,使?jié)舛冗_(dá)到1.0 x 10^7 cell/mL

第二步:
中性粒細(xì)胞染色

用Human TruStain FcX和True-Stain Monocyte Blocker阻斷非特異性結(jié)合,并在室溫下?lián)嵊?5分鐘,隨后用CD45 APC-Cy7、CD16 AF488、CD11b PE和SYTOX AADvanced對細(xì)胞進(jìn)行染色。經(jīng)37 μm濾帽過濾后,以3 x 105 cell/mL的濃度進(jìn)行分析和分選。

第三步:
WOLF G2 分選 

感興趣的細(xì)胞群體由CD16-AF488陽性和SYTOX AADvanced陰性的活中性粒細(xì)胞組成(圖1)。將1 x 105個(gè)細(xì)胞分選到含有分選緩沖液的收集管中。此外,制備了一個(gè)樣本并用細(xì)胞活化混合物(BioLegend,#423301)進(jìn)行刺激,作為中性粒細(xì)胞活化的對照。而且,使用單染對照、SpectraComp 補(bǔ)償微球(Slingshot Bio,#SSB-05-A)和 ViaComp 微球(Slingshot Bio,#SSBS-003)創(chuàng)建了一個(gè)補(bǔ)償矩陣。使用WOLF G2軟件進(jìn)行細(xì)胞分選,通過一系列圈門策略,從單細(xì)胞門到存活細(xì)胞門,再到CD45陽性的白細(xì)胞門,最后確定CD16陽性的中性粒細(xì)胞。



1. 分選中性粒細(xì)胞的圈門策略:使用WOLF G2軟件,用戶可以輕松地對感興趣的群體進(jìn)行圈門以排序,(A)使用FSC/BSC散點(diǎn)圖創(chuàng)建樣本門并消除碎片。(B)通過FSC-width vs FSC-H圖確定了單細(xì)胞門。(C)用活性染料從單細(xì)胞門鑒定活細(xì)胞,(D)白細(xì)胞鑒定為CD45+,(E)最后,中性粒細(xì)胞在CD45+ vs CD16+圖中被鑒定為CD16+。

第四步:
分選后分析

分選后的樣本在37°C、5% CO2環(huán)境中孵育2小時(shí),然后重新使用WOLF G2進(jìn)行分析,評估存活率、純度和中性粒細(xì)胞的激活狀態(tài)。





02
實(shí)驗(yàn)結(jié)果


1、WOLF G2分選后,純度從92 ± 1.9% SD提高至98 ± 0.3% SD(圖2),存活率從88 ± 1.6% SD提高至97 ± 0.1% SD(圖3)。雖然從梯度富集的樣品開始,但WOLF進(jìn)一步去除了死亡的中性粒細(xì)胞,這些中性粒細(xì)胞可以繼續(xù)釋放細(xì)胞因子并增加樣品中活化的中性粒細(xì)胞的數(shù)量[5]。


2. 高純度中性粒細(xì)胞的分選結(jié)果: 基于活CD16-AF488陽性細(xì)胞進(jìn)行分選后,中性粒細(xì)胞的純度提高了約6.0%。此外,用Wright染色的(B)全血和(C)分選后樣本的代表性圖像顯示了細(xì)胞碎片和不需要的細(xì)胞的有效去除。使用明場(ECHO Revolve)以40倍放大率對載玻片進(jìn)行成像。


3. 分選后中性粒細(xì)胞活力: 在增加活中性粒細(xì)胞數(shù)量的同時(shí),重要的是,與SYTOX AADvanced陽性死亡細(xì)胞超過11%的預(yù)分選樣品相比,分選后樣品中的死亡細(xì)胞數(shù)量減少了3倍以上,約為2.9%


2、分選的中性粒細(xì)胞與未分選對照相比,未觀察到激活中性粒細(xì)胞數(shù)量的變化,而激活對照組顯示CD11b陽性的激活中性粒細(xì)胞數(shù)量顯著增加(圖4)。

4. 分選后無中性粒細(xì)胞活化:使用微流控分選可分離出分選后無活化的中性粒細(xì)胞。相比之下,活化對照樣品與分選前和分選后的樣品相比,活化細(xì)胞增加了兩倍。



03
總結(jié)


WOLF G2單細(xì)胞柔性分選系統(tǒng)為中性粒細(xì)胞的分離和研究提供了一種全新的方法,通過溫和的分選過程,實(shí)現(xiàn)了高純度和高存活率的目標(biāo),同時(shí)避免了細(xì)胞活化,為后續(xù)應(yīng)用和新療法的發(fā)現(xiàn)提供了有力支持。


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參考文獻(xiàn):

1. Karsten, C. B., Mehta, N., Shin, S. A., Diefenbach, T. J., Slein, M. D., Karpinski, W., Irvine, E. B., Broge, T., Suscovich, T. J., & Alter, G. (2019). A versatile high-throughput assay to characterize antibody-mediated neutrophil phagocytosis. Journal of Immunological Methods, 471, 46–56. https://doi.org/10.1016/j.jim.2019.05.006

2. Rosales, C. (2018). Neutrophil: A cell with many roles in inflammation or several cell types? Frontiers in Physiology, 9. https://doi.org/10.3389/ fphys.2018.00113

3. Blanter, M., Gouwy, M., & Struyf, S. (2021). Studying Neutrophil Function in vitro: Cell Models and Environmental Factors. Journal of Inflammation Research, Volume 14, 141–162. https://doi.org/10.2147/jir.s284941

4. Blanter M, Cambier S, De Bondt M, Vanbrabant L, P?rtner N, Abouelasrar Salama S, Metzemaekers M, Marques PE, Struyf S, Proost P & Gouwy M (2022) Method Matters: Effect of Purification Technology on Neutrophil Phenotype and Function. Front. Immunol. 13:820058. doi: 10.3389/fimmu.2022.820058

5. Iba, T., Hashiguchi, N., Nagaoka, I., Tabe, Y., & Murai, M. (2013). Neutrophil cell death in response to infection and its relation to coagulation. Journal of Intensive Care, 1(1). https://doi.org/10.1186/20